易科泰植物表型成像技术应用：植物病害表型组学分析（一）

自然界中的植物都会面临各种病害的侵染。病害防治更是农业生产中的重中之重。科学家们一直致力于用各种技术研究植物病害的发病机制和防治方法。在近年的最新研究中，新兴的组学研究技术逐渐成为病害研究的热点。在各种组学技术中，从直观、无损、快速、简便以及农业应用推广上考虑，植物表型成像分析技术无疑是选择之一。

传统表型概念里以形态学指标为主。而现代植物表型成像分析技术已经不局限于形态学，其主要应用的成像技术如下，它们在植物病害研究分别反映植物的不同表型变化与生理过程：

植物病害的病原体有、细菌、真菌。而植物种类又有模式植物、谷物、蔬菜、水果等。植物表型成像分析技术能够应对这些不同的研究需求吗？我们从具体的文献案例里查找答案，本期主要介绍关于抗病毒基因、蔬菜水果的叶片细菌病害相关研究案例：

一、利用模式植物研究抗病毒基因

法国国家农业科学研究院（INRA）的Jean-Luc Gallois研究团队一直致力于马铃薯y病毒组的抗病基因研究。这一病毒组中包括芜菁花叶病毒(TuMV)、西瓜花叶病毒(WMV)、三叶草黄脉病毒(ClYVV)等重要的农作物病毒。这方面研究的难点在于如何直观、定量地测量病毒在植物样品上的分布与积累。FluorCam多光谱荧光成像技术的出现解决了这一难题。FluorCam多光谱荧光成像技术仅能进行了叶绿素荧光成像测量，也提供了关键的GFP标记病毒活体成像图。GFP成像图直观地表现病毒量的差异，反映了不同基因功能对拟南芥病毒抗性的影响。同时，叶绿素荧光成像则反映病毒对光合系统的损伤，可以同步提供病害光合表型信息。

法国国家农业科学研究院利用FluorCam封闭式荧光成像系统，从2015年起发表了一系列相关文章，研究方向包括病毒的TOR信号调控、跨物种合成eIF4E1等位基因获得病毒抗性、利用CRISPR-Cas9 base editing基因编辑技术模仿eIF4E自然多态性与病毒抗性的关系、拟南芥敲除eIF4E1获得ClYVV抗性但又与TuMV的敏感性相关等。

虽然GFP活体成像技术一般不归于植物表型成像技术中，但在病害研究中会经常利用带GFP标记的病原体来定量分析感染面积与病毒积累量。FluorCam多光谱荧光成像技术的GFP活体成像功能也广泛应用与其他病原体的指示测量。

参考文献：

1.Zafirov D, et al. 2021. When a knockout is an Achilles' heel: Resistance to one potyvirus species triggers hypersusceptibility to another one in Arabidopsis thaliana. Mol Plant Pathol. 22: 334–347

2.Bastet A, et al. 2019. Mimicking natural polymorphism in eIF4E by CRISPR‐Cas9 base editing is associated with resistance to potyviruses. Plant Biotechnology Journal 17: 1736–1750

3.Bastet A, et al. 2018. Trans-species synthetic gene design allows resistance pyramiding and broad-spectrum engineering of virus resistance in plants. Plant Biotechnology Journal: 1–13

4.Qin Y, et al. 2019. Purification and Characterization of a Secretory Alkaline Metalloprotease with Highly Potent Antiviral Activity from Serratia marcescens Strain S3. Journal of Agricultural and Food Chemistry 67(11): 3168-3178

二、病害快速无损检测与抗性品种鉴定

对植物病害进行快速检测与早期预警，无损快速的植物表型成像技术无疑是好的选择。但植物表型组的相关参数至少有几十项，哪一项才是最准确的呢？很多科学家都进行了相关的探索。

德国莱布尼茨蔬菜和观赏植物研究所IGZ将刚发芽的生菜幼苗感染了立枯丝核菌（Rhizoctonia solani），之后使用多种表型成像分析技术测试了各种不同参数，试图确定哪些技术的哪个参数能够更灵敏地将感染病害的植株和未感染的植株区分开。

研究中进行成像分析的参数与所属技术如下：

1.叶绿素荧光成像：Fo、Fp、Ft、Fv、最大光化学效率Fv/Fm、荧光衰减比率Rfd、光合有效叶面积日相对生长速率A_abs和A_rel

2.UV-MCF多光谱荧光成像：F440、F520、F690、F740及各个参数之间的比值

3.红外热成像：作物水胁迫指数I1、I2、I3、平均温度、中值温度、温度范围

4.反射光谱成像：R_NIR、R_RED、归一化植被指数NDVI 

成像技术的另一个优势就是可以同时测量几十株乃至上百株幼苗样品，通过配套软件就能够简便地去除图像中的背景，自动计算相应的参数。

更为方便的是，一台加装红外热成像模块的FluorCam多光谱荧光成像系统就可以完成所有上述参数的测量与成像。

测试结果发现，感染病害的植株和未感染的植株之间，最大光化学效率Fv/Fm、荧光衰减比率Rfd、归一化植被指数NDVI、作物水胁迫指数I1、光合有效叶面积日相对生长速率A_rel、多光谱荧光F440、F520等参数都表现出显著差异。通过进一步数据统计分析最终发现最大光化学效率Fv/Fm、荧光衰减比率Rfd在本次实验中的识别效果好，≤0.052。Fv/Fm＞0.73的生菜幼苗即可认为是健康的。Fv/Fm甚至能够在病害症状发生前即可检测到病菌感染。研究者希望通过进一步工作，将这一发现应用于园艺和农业生产实践，比如优良抗病蔬菜品种的选育、病害的早期发现与防治等。

浙江大学同时使用FluorCam荧光成像系统对柑橘黄龙病进行了检测分析。研究者通过对健康叶片、感染黄龙病叶片和养分缺乏叶片进行叶绿素荧光成像分析，确定了黄龙病的荧光标志，即“光合指纹"，结合叶绿素荧光参数与成像图，对叶片黄龙病取得了最佳识别分类效果，准确率达到97%。

参考文献：

1.Sandmann M, et al. 2018. The use of features from fluorescence, thermography and NDVI imaging to detect biotic stress in lettuce. Plant Disease 102: 1101-1107

2.Weng H, et al. 2020. Characterization and detection of leaf photosynthetic response to citrus Huanglongbing from cool to hot seasons in two orchards. Transactions of the ASABE 63(2): 501-512

北京易科泰生态技术公司提供植物病害表型全面技术方案：

1.FluorCam叶绿素荧光/多光谱荧光技术

2.PlantScreen植物高通量表型成像分析平台

3.FluorPen手持式叶绿素荧光仪、SpectraPen手持式植物高光谱仪

4.PhenoPlot®轻便型植物表型成像分析系统

5.PhenoPlot®悬浮双轨式表型成像分析系统

6.PhenoTron®-HSI多功能高光谱成像分析系统

7.PhenoTron®复式智能LED光源培养与光谱成像分析平台

8.PhenoTron®PTS植物光谱成像分析平台

9.PhenoTron®-XYZ表型成像分析系统