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FluorPen手持式叶绿素荧光仪(分离叶夹)
产品时间:2019-02-22
FluorPen手持式叶绿素荧光仪(分离叶夹)采用调试式荧光测量技术,可设置多种参数,方便测量多种植物叶绿素荧光。外观小巧,方便携带,设计新颖,操作简单,经济耐用,精度高稳定性好。自带暗适应叶夹,容易操作。

FluorPen手持式叶绿素荧光仪(分离叶夹)

FluorPen手持式叶绿素荧光仪(分离叶夹)采用调试式荧光测量技术,可设置多种参数,方便测量多种植物叶绿素荧光。外观小巧,方便携带,设计新颖,操作简单,经济耐用,精度高稳定性好。自带暗适应叶夹,容易操作。

应用领域

 适用于光合作用研究和教学,植物及分子生物学研究,农业、林业,生物技术领域等。研究内容涉及光合活性、胁迫响应、农药药效测试、突变等。

  • 植物光合特性和代谢紊乱筛选
  • 生物和非生物胁迫的检测
  • 植物抗胁迫能力或者易感性研究
  • 代谢混乱研究
  • 长势与产量评估
  • 植物——微生物交互作用研究
  • 植物——原生动物交互作用研究

典型样品

  • 植物叶片
  • 其它

工作原理

利用调制式荧光测量技术,采用LED光源,选择仪器内置的给光方案测量并计算叶绿素荧光的各种参数。

功能特点:实验过程和测量参数

  • Ft:瞬时叶绿素荧光、暗适应完成后Ft=Fo
  • QY:光量子效率,表示光系统II 的效率,等于Fv/Fm(暗适应完成的样品)或Fv’/Fm’ (光适应完成的样品)
  • OJIP:叶绿素荧光瞬时OJIP曲线是反应光合作用过程中植物生理时间过程的重要信号。
  • NPQ:非光化学淬灭,表示光合作用中叶绿素吸收光能后以热形式散失掉的部分。
  • 光曲线:Qy对不同光强的适应曲线。
  • PAR测量:可在荧光仪上显示PAR值,可计算20次检测值的平均。
  • 另外还具有GPS定位功能

技术参数

  • 测量参数:Fo, Ft, Fm, Fm´,QY, OJIP, NPQ 1,2 和光曲线1,2,3。
  • 测量光:蓝光(可选红光或白光)
  • 光化学光和饱和光:0–3000µmol (photons).m-2.s-1可调
  • 波长检测范围:697nm-750nm
  • BOIS:可升级

光曲线测量方案

通讯:USB接口

 

  • 存储:4M
  • 数据存储:100,000个
  • 显示:2 x 8字符黑白液晶屏
  • 键盘:密封防水设计2键
  • 自动关机:5分钟无操作
  • 电源:4 AAA碱性电池或充电电池
  • 电池寿命:持续测量70 h
  • 低电报警
  • 尺寸:120 x 57 x 30 mm; 4.7" x 2.2" x 1.2"
  • 重量:180 g, 6.5 oz
  • 操作条件:温度:0 ~ 55 ºC;相对湿度:0 ~ 95 %非冷凝
  • 存储条件:温度:-10 to +60 ºC;相对湿度:0 ~ 95 %非冷凝
  • 软件:FluorPen2.0, Windows 2000,XP或更高*,实时显示和遥控,植入GPS绘图,EXCEL输出
  • PAR传感器:读数单位µmol(photons)/m².s,可显示读数,检测范围400-700 nm

操作软件与实验结果

配置型号指南:

标准配置——FP100max-D + GPS模块 + PAR传感器:功能完备

简化配置——FP100max-D:无PAR数据+ 无GPS数据

 

产地: 欧洲

参考文献

Harding S.A., Jarvie M.M., Lindroth R.L. and Tsai Ch-J. (2009): A comparative analysis of phenylpropanoid metabolism, N utilization, and carbon partitioning in fast- and slow-growing Populus hybrid clones. J. Exp. Botany, Vol. 60 (12), pp. 3443-3452.

Klem K. and Bajerova E. (2008): Adjustment of herbicide dose in sugar beet based on non-invasive chlorophyll fluorescence measurements. AgEng 2008 Conference, Hersonissos, Crete.

附:参数列表

Bckg = background

Fo: = F50µs; fluorescence intensity at 50 µs

Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)

Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)

Fm: = maximal fluorescence intensity

Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)

Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)

Fm / Fo = Fm / Fo

Fv / Fo = Fv / Fo

Fv / Fm = Fv / Fm

Mo = TRo / RC - ETo / RC

Area = area between fluorescence curve and Fm

Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)

Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)

N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA

Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)

Phi_o = I - Vj

Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o

Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)

Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)

ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)

TRo / RC = Mo . (I / Vj)

ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)

DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)

 

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