FL3500多功能叶绿素荧光仪

FL3500多功能叶绿素荧光仪是专门用于对蓝绿藻或绿藻等微藻，叶绿体或类囊体悬浮物，乃至叶片进行光合作用研究的强大科研工具。仪器具备双通道测量控制，可控制测量样品的温度，并配备单翻转光（STF），内置多种可用户自行修改的测量程序，可进行目前上对于叶绿素荧光的各种深入机理研究。其核心结构是包含了一个悬浮液标准样品杯的光学测量头，内置3组LED光源和1个500 kHz/16位 AD 转换的PIN二极管信号检测器。AD转换的增益和积分时间可以通过软件控制。检测器测量叶绿素荧光信号的时间分辨率可高达4 μs（快速版为1μs）。系统配置的光合放氧测量模块，使其可以对放氧复合物的状态转换做更深入研究。

FL3500多功能叶绿素荧光仪配备有4种测量室：标准版、快速版、叶夹版、水下版。主机为双通道设计，可同时连接任意两种测量室，大大扩展了叶绿素荧光测量的应用范围，可以对任何类型的植物样品进行叶绿素荧光测量。

应用领域：

·植物光合特性和代谢紊乱筛选

·生物和非生物胁迫的检测

·植物抗胁迫能力或者易感性研究

·代谢混乱研究

·光合系统工作机理研究

·受胁迫植物光合生理应对策略研究

典型样品：

·蓝藻（蓝细菌）

·绿藻

·叶绿体悬浮物

· 类囊体悬浮物

·植物碎片

功能特点：

·具备双通道测量控制，可以与各种测量单元如标准版、快速版、叶夹式及水下测量头等配合使用，各版本的测量头可互换使用

·内置多种可用户自行修改的测量程序，涵盖目前上对于叶绿素荧光的各种一般性研究和深入机理研究

·配备单翻转光（STF），可进行QA–再氧化动力学、S状态转换等光合机理研究

·配备高灵敏度检测器，可进行OJIP快速荧光动力学分析

·可控制测量样品的温度并进行磁力搅拌

技术参数：

·实验程序：叶绿素荧光诱导测量；PAM（脉冲调制）测量；OJIP快速荧光动力学测量；QA–再氧化动力学；S状态转换；叶绿素荧光淬灭

  荧光参数：F₀，Fm，Fv，F₀’，Fm’，Fv’，QY(II)，NPQ，ΦPSII，Fv/Fm，Fv’/Fm’，Rfd，qN，qP，ETR等50多项叶绿素荧光参数与图像，OJIP曲线与F₀、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F₀、Fv / F₀、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P₀、Psi_₀、Phi_E₀、Phi_D₀、Phi_Pav、ABS / RC、TR₀ / RC、ET₀ / RC、DI₀ / RC等20多项相关参数

·时间分辨率（采样频率）：高灵敏度检测器，时间分辨率达4μs（快速版为1μs）

·控制单元：双通道通用高度精确性自动微处理器，可以与各种测量单元如标准版、快速版、叶夹式及水下测量头等配合使用（无需另行购买控制单元）

·测量单元类型：可选择在一台主机上配备两种测量单元同时工作，推荐叶夹版+标准版/快速版或叶夹版+水下版

1.标准版

2.快速版：时间分辨率在标准版的基础上提高到1 μs，可精确捕捉和描绘快速荧光瞬变过程，使得运用PAM技术对OIJP曲线和光闪荧光诱导的快速动力学测量更加准确高效，能够更好的计算各种相关参数。

3.叶夹版

的叶夹式测量单元，测量区域直径为12.7mm(0.5 inch)。叶夹式测量单元可以无损地夹持叶片进行测量，而且不会使叶片脱离其原来的微环境。全部所需的光源与检测器都内置在测量单元进行直接测量，避免了一般的荧光仪使用光纤造成检测光信号的衰减。

4.水下版

设计用来直接在水下测量诸如水下植物，珊瑚或者海藻等样品的叶绿素荧光。的水下探头配有用于水下操作的特殊支架，zui大测量深度为水下1m。

·测量光闪：标准为波长617nm的橙光或455nm的蓝光，光闪时间2–5μs

·单翻转饱和光闪：标准光源为630nm的红光，光闪时间20–50μs

·持续光化学光：标准为630nm的红光或455nm的蓝光，zui大光强2500 μmol(photons)/m2.s；

·远红外光源（选配）：用于激发光系统I，波长735nm

·氧电极（选配）：测量藻类的氧气释放

·每组lED光源强度和时间可通关软件调控，同时光源可根据研究要求选配

·温度控制：TR 2000温度调节器，控温范围0–70℃，精确度0.1℃

·电磁搅拌：8mm×3mm标准磁力棒

·样品试管：底面积10×10mm，容积4ml

·AD转换器：试管式为500 kHz/16–bit

· FluorWin软件：定义或创建实验方案、光源控制设置、数据输出、分析处理和图表显示

典型应用：荧光诱导过程分析

产地：捷克

参考文献：

§   Functioning of the Bidirectional Hydrogenase in Different Unicellular Cyanobacteria, é Kiss, et al, 2013. Research for Food, Fuel and the Future

§   Excess Ca²⁺does not alleviate but increases the toxicity of Hg²⁺ to photosystem II in Synechocystis sp.(Cyanophyta), D Zhang, et al, 2013. Ecotoxicology and environmental safety

§   Inhibition of the Water Oxidizing Complex of Photosystem II and the Reoxidation of the Quinone Acceptor QA? by Pb2+, A Belatik, et al, 2013. PloS one

§   Destabilization of the Oxygen Evolving Complex of Photosystem II by Al3+, I Hasni, et al, 2013. Photochemistry and Photobiology

§   Effects of Sb (V) on growth and chlorophyll fluorescence of Microcystis aeruginosa (FACHB–905),S Wang, et al, 2012. Current Microbiology

§   Correlations between the temperature dependence of chlorophyll fluorescence and the fluidity of thylakoid membranes, A Tovuu, et al, 2012. Physiologia Plantarum

§   Developmental Defects in Mutants of the PsbP Domain Protein5 inArabidopsis thaliana. JL Roose, et al, 2011. PloS one

§   Inhibition of photosystems I and II activities in salt stress–exposed Fenugreek (Trigonella foenum graecum). M Zaghdoudi, et al, 2011. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology

§   Productivity correlated to photobiochemical performance of Chlorella mass cultures grown outdoors in thin–layer cascades. J Masojídek, et al, 2011. Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology

§   Binding Stoichiometry and Affinity of the Manganese–Stabilizing Protein Affects Redox Reactions on the Oxidizing Side of Photosystem II. JL Roose, et al, 2011. Biochemistry